Elektrophorese
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Elektrophorese

Theorie und Praxis

  1. 429 Seiten
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Elektrophorese

Theorie und Praxis

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Information

Jahr
2011
ISBN drucken
9783110136609
eBook-ISBN:
9783110819427

Inhaltsverzeichnis

  1. Abkürzungen
  2. Wörterbuch der elektrophoretischen Termini
  3. 1 Theorie und Grundlagen der Elektrophorese
  4. 1.1 Die Elektrophorese und ihre Systematik
  5. 1.1.1 Überblick über die Elektrophorese
  6. Auflösung der Elektrophorese
  7. Vergleich zwischen der Elektrophorese und anderen Trennmethoden
  8. 1.1.2 Wichtigste elektrophoretische Methoden
  9. Zonenelektrophorese
  10. Isotachophorese
  11. Isoelektrische Fokussierung
  12. Kombinationen zwischen den wichtigsten elektrophoretischen Methoden
  13. Blotting
  14. 1.2 Die Elektrophorese wird in Puffern durchgeführt
  15. 1.2.1 Elektrolyte
  16. Konzentrationsdissoziationskonstante und Ionenstärke
  17. 1.2.2 Puffer
  18. Pufferkapazität
  19. 1.2.3 Puffer, die bei der Elektrophorese häufig verwendet werden
  20. 1.3 Die Proteine und Nukleinsäuren bilden in Lösung Polyionen
  21. 1.3.1 Elektrische Doppelschicht eines geladenen Teilchens
  22. Modell von Helmholtz
  23. Modell von Gouy-Chapman
  24. Theorie von Debye-Hückel
  25. Modell von Stern
  26. 1.3.2 Struktur und Konformation der Proteine und Nukleinsäuren
  27. Struktur der Proteine
  28. Struktur der Nukleinsäuren
  29. 1.3.3 Massen und Ladungen der Proteine und Nukleinsäuren
  30. Massen und Ladungen der Proteine
  31. Isoelektrischer Punkt eines Proteins
  32. Massen und Ladungen der Nukleinsäuren
  33. 1.3.4 Native und denaturierte Proteine und Nukleinsäuren
  34. Denaturierung der Proteine
  35. Denaturierung (Schmelzen) der Nukleinsäuren
  36. 1.4 Die Polyionen bewegen sich in einem elektrischen Feld
  37. 1.4.1 Gleichung von Smoluchowski
  38. 1.4.2 Gleichung von Hückel
  39. 1.4.3 Funktion von Henry
  40. 1.4.4 Gleichung von Onsager
  41. 1.4.5 Gleichung von Robinson-Stokes
  42. 1.4.6 Parameter der Ionenmobilität
  43. 1.4.7 Quadratische Gleichung der Ionenmobilität
  44. 1.5 Theorie der Elektrophorese
  45. 1.5.1 Wovon hängt die Polyionenmobilität ab?
  46. Einfluß der Natur des Polyions
  47. Einfluß des Puffers
  48. Einfluß des Trägers
  49. 1.5.2 Wovon hängt die Stärke des elektrischen Feldes ab?
  50. 1.5.3 Theorie der isoelektrischen Fokussierung
  51. Auflösung der isoelektrischen Fokussierung
  52. IEF mit Trägerampholyten
  53. IEF in immobilisierten pH-Gradienten
  54. 1.5.4 Entwicklung Joulescher Wärme während der Elektrophorese
  55. 1.6 Die Elektrophorese benötigt spezielle Geräte
  56. 1.6.1 Elektrophoretische Kammern
  57. Horizontalkammern
  58. Vertikalkammern
  59. 1.6.2 Stromversorger
  60. 1.6.3 Thermostate
  61. 1.6.4 Densitometer
  62. Optik eines Densitometers
  63. 1.6.5 Gelgießsystem
  64. Gießkassette
  65. Gradientenmischer
  66. 1.6.6 Puffermischer
  67. 1.6.7 Blotter
  68. 1.6.8 Geräte für halbautomatische Elektrophorese
  69. 1.6.9 Geräte für präparative Elektrophorese
  70. 1.7 Die Elektrophorese wird in unterschiedlichen Trägern durchgefühlt
  71. 1.7.1 Papier und Dünnschichten
  72. 1.7.2 Acetylcellulose und Cellogel - Struktur und Eigenschaften
  73. Acetylcellulose-Folien und Cellogel-Streifen
  74. 1.7.3 Gele
  75. 1.7.4 Stärkegel - Struktur und Eigenschaften
  76. 1.7.5 Agarosegel - Struktur und Eigenschaften
  77. Herstellung von Agarosegelen
  78. 1.7.6 Polyacrylamidgel - Struktur und Eigenschaften
  79. Der Trennbereich hängt von der Polyacrylamidkonzentration ab - Ferguson-Plots
  80. Dünne und ultradünne Polyacrylamidgele
  81. Herstellung von homogenen foliengestützten Polyacrylamidgelen
  82. Kassettentechnik
  83. Klapptechnik
  84. Schiebetechnik
  85. Herstellung von Gradienten-Polyacrylamidgelen auf Haftfolien
  86. Lineare Gradientengele
  87. Exponentielle Gradientengele
  88. Herstellung von netzgestützten Polyacrylamidgelen
  89. Herstellung von Polyacrylamidgelen mit erhöhter Polyolkonzentration
  90. Herstellung von rehydratisierbaren Polyacrylamidgelen
  91. Aufgaben 1
  92. 2 Elektrophorese der Proteine
  93. Papier- und Dünnschicht-Zonenelektrophorese
  94. Stärkegel-Zonenelektrophorese
  95. 2.1 Acetylcellulose- und Cellogel-Zonenelektrophorese der Proteine
  96. 2.1.1 Acetylcellulose-Zonenelektrophorese
  97. Acetylcellulose-Zonenelektrophorese von Serumproteinen
  98. 2.1.2 Cellogel-Zonenelektrophorese
  99. Problemlösungen
  100. 2.2 Agarosegel-Zonenelektrophorese der Proteine
  101. 2.2.1 Agarosegel-Zonenelektrophorese von Serumproteinen
  102. Probenvorbereitung
  103. Elektrophoretische Trennbedingungen
  104. 2.2.2 Immunelektrophorese
  105. Immundiffusions-Elektrophorese nach Grabar und Williams
  106. Rocket-Immunelektrophorese nach Laurell
  107. Gegenstrom-Immunelektrophorese nach Estela und Heinrichs
  108. Immunfixation
  109. Immunprinting
  110. 2D-Immunelektrophorese
  111. 2.2.3 Affinitätselektrophorese
  112. Problemlösungen
  113. 2.3 Polyacrylamidgel-Zonenelektrophorese der Proteine
  114. Probenvorbereitung
  115. 2.3.1 Homogengel-Zonenelektrophorese
  116. 2.3.2 Gradientengel-Zonenelektrophorese
  117. Effekt des Molekülsiebes
  118. 2.3.3 Ermittlung der Radien und Massen von nativen Proteinen
  119. 2.3.4 Polyacrylamidgel-Zonenelektrophorese von ladungs- und massenisomeren Proteinen
  120. Problemlösungen
  121. 2.4 Isotachophorese der Proteine
  122. 2.4.1 "Beharrliche" Funktion von Kohlrausch
  123. 2.4.2 Gleichungen eines diskontinuierlichen Puffersystems
  124. Problemlösungen
  125. 2.5 Kapillarelektrophorese der Proteine
  126. 2.5.1 Injektion
  127. 2.5.2 Trennung
  128. 2.5.3 Detektion
  129. 2.5.4 Anwendungsbeispiele
  130. Problemlösungen
  131. 2.6 Disk-Elektrophorese der Proteine
  132. 2.6.1 Disk-Elektrophorese nach Ornstein und Davis
  133. Puffer-Gel-Systeme für die Disk-Elektrophorese nach Ornstein und Davis
  134. 2.6.2 Disk-Elektrophorese nach Allen et al
  135. Effekt von Hjerten
  136. 2.6.3 Disk-Elektrophorese in einem Puffer bei zwei pH-Werten
  137. Problemlösungen
  138. 2.7 SDS-Elektrophorese der Proteine
  139. Vertikale und horizontale SDS-Elektrophorese
  140. 2.7.1 SDS-Zonenelektrophorese
  141. Nichtreduzierende Probenvorbereitung
  142. Reduzierende Probenvorbereitung
  143. Reduzierende Probenvorbereitung mit Alkylierung
  144. 2.7.2 SDS-Disk-Elektrophorese - die verbreitetste elektrophoretische Methode
  145. SDS-Disk-Elektrophorese in homogenen Gelen
  146. SDS-Disk-Elektrophorese in einem TRIS-Chlorid-Glycinat-Puffersystem
  147. SDS-Disk-Elektrophorese in einem TRIS-Formiat-Taurinat-Puffersystem
  148. SDS-Disk-Elektrophorese in Gradientengelen
  149. SDS-Disk-Elektrophorese in einem TRIS-Acetat-TRICINat-Puffersystem
  150. 2.7.3 Färbung der Proteinbanden
  151. 2.7.4 Blotting nach der SDS-Elektrophorese
  152. 2.7.5 Bestimmung der Molekülmassen von SDS-denaturierten Proteinen
  153. Problemlösungen
  154. 2.8 Isoelektrische Fokussierung der Proteine - eine besondere Art von Elektrophorese
  155. 2.8.1 Isoelektrische Fokussierung mit Trägerampholyten
  156. Eigenschaften der Trägerampholyte
  157. IEF mit Trägerampholyten in Polyacrylamidgelen
  158. Dünne und ultradünne Polyacrylamidgele für IEF mit Trägerampholyten
  159. Rehydratisierbare Polyacrylamidgele für IEF mit Trägerampholyten
  160. IEF mit Trägerampholyten in Agarosegelen
  161. Dünne und ultradünne Agarosegele für IEF
  162. Durchführung der IEF in Gelen mit Trägerampholyten
  163. 2.8.2 Isoelektrische Fokussierung in immobilisierten pH-Gradienten
  164. Eigenschaften der Immobiline
  165. Dünne und ultradünne IPG-Gele
  166. Rehydratisierbare IPG-Gele
  167. Durchführung der IEF in IPG-Gelen
  168. Problemlösungen
  169. 2.9 Free-Flow-Elektrophorese der Proteine
  170. Theorie der Free-Flow-Elektrophorese
  171. 2.9.1 Free-Flow-Zonenelektrophorese
  172. 2.9.2 Free-Flow-Isotachophorese
  173. 2.9.3 Free-Flow-Isoelektrische-Fokussierung
  174. 2.9.4 Detektion
  175. Problemlösungen
  176. 2.10 Die Proteine können in zwei Richtungen getrennt werden - die zweidimensionale Elektrophorese
  177. 2.10.1 Isoelektrische Fokussierung in der ersten Dimension
  178. Herstellung von Polyacrylamidgelen mit Trägerampholyten oder IPG-Gelen für die isoelektrische Fokussierung
  179. Probenvorbereitung für die erste Dimension
  180. Isoelektrische Fokussierung
  181. 2.10.2 SDS-Elektrophorese in der zweiten Dimension
  182. Herstellung von Gelen für die SDS-Elektrophorese
  183. SDS-Äquilibrierung der IEF-Gelstreifen für die zweite Dimension
  184. SDS-Elektrophorese
  185. 2.10.3 Nachweis der Proteine und Auswertung der 2D-Pherogramme
  186. Problemlösungen
  187. 2.11 Präparative Elektrophorese der Proteine
  188. 2.11.1 Elution der Proteine während der Elektrophorese
  189. 2.11.2 Elution der Proteine nach der Elektrophorese
  190. Problemlösungen
  191. 2.12 Präparative isoelektrische Fokussierung
  192. 2.12.1 Präparative IEF mit Trägerampholyten in granulierten Gelen
  193. Herstellung eines granulierten Gels
  194. Einlegen einer Probe ins granulierte Gel
  195. Isoelektrische Fokussierung
  196. Isolieren und Elution der Proteine
  197. Rezyklisierende isoelektrische Fokussierung
  198. 2.12.2 Präparative IEF in immobilisierten pH-Gradienten
  199. Präparative IEF in dicken IPG-Gelen
  200. Kanalfokussierung
  201. Problemlösungen
  202. 2.13 Qualitative Auswertung der Protein-Pherogramme
  203. Fixieren
  204. Färben
  205. Entfärben
  206. Trocknen
  207. 2.13.1 Coomassie-Färbung
  208. 2.13.2 Silberfärbung der Proteine
  209. 2.13.3 Glykoproteinfärbung
  210. 2.13.4 Lipoproteinfärbung
  211. 2.13.5 Enzymfärbung
  212. 2.13.6 Immunologische Nachweismethoden
  213. 2.13.7 Autoradiographie und Fluorographie der Proteine
  214. 2.13.8 Dokumentation der Protein-Pherogramme
  215. Problemlösungen
  216. 2.14 Quantitative Auswertung der Protein-Pherogramme - Densitometrie
  217. 2.14.1 Grundlagen der Densitometrie
  218. 2.14.2 Auflösung eines Densitometers
  219. 2.14.3 Basislinie und Bandenintegration
  220. 2.14.4 Auswertung eines Densitogramms
  221. 2.14.5 Zweidimensionale Densitometrie
  222. 2.14.6 Densitometriefehler
  223. Problemlösungen
  224. 2.15 Blotting der Proteine - Western-Blotting
  225. 2.15.1 Blotmembranen
  226. 2.15.2 Transfer
  227. Elektroblotting der Proteine
  228. Tankblotting
  229. Semidry-Blotting
  230. Transferbedingungen
  231. 2.15.3 Blockierung
  232. 2.15.4 Detektion durch Sonden und Farbstoffe
  233. Problemlösungen
  234. 2.16 Fertiggele und -kits für Protein-Elektrophorese
  235. 2.16.1 Fertigkits für Acetylcellulose-Zonenelektrophorese
  236. 2.16.2 Agarose-Fertiggele und -kits
  237. Fertiggele und -kits für Agarosegel-Zonenelektrophorese der Proteine
  238. Fertiggele und -kits für Immunfixation und Affinitätselektrophorese
  239. 2.16.3 Polyacrylamid-Fertiggele und -kits
  240. Fertiggele und -kits für Disk-Elektrophorese der Proteine
  241. Fertiggele und -kits für SDS-Disk-Elektrophorese der Proteine
  242. Fertiggele und -kits für isoelektrische Fokussierung mit Trägerampholyten
  243. Fertiggele und -kits für isoelektrische Fokussierung mit Immobilinen
  244. Fertigkits für Blotting der Proteine
  245. Problemlösungen
  246. 2.17 Klinische Anwendungen der Protein-Elektrophorese
  247. 2.17.1 Serumprotein-Elektrophorese
  248. Albumin
  249. Alpha1-Globuline
  250. Alpha2-Globuline
  251. Beta-Globuline
  252. Gamma-Globuline
  253. 2.17.2 Lipoprotein-Elektrophorese
  254. Alpha-Lipoproteine
  255. Präbeta-Lipoproteine
  256. Beta-Lipoproteine
  257. Chylomikronen
  258. Hyperlipoproteinämien
  259. 2.17.3 Immunglobulin-Elektrophorese
  260. Struktur und Funktion der Immunglobuline
  261. 2.17.4 Hämoglobin-Elektrophorese
  262. Normale Hämoglobine
  263. Anomale und pathologische Hämoglobine
  264. Sichelzellanämie
  265. Thalassämien
  266. Durchführung der Hämoglobin-Elektrophorese
  267. 2.17.5 Elektrophorese der Kreatin-Kinase
  268. Isoenzyme der Kreatin-Kinase und ihre klinische Bedeutung
  269. 2.17.6 Elektrophorese der Lactat-Dehydrogenase
  270. Isoenzyme der Lactat-Dehydrogenase
  271. Klinische Bedeutung der LDH-Isoenzyme
  272. 2.17.7 Elektrophorese der alkalischen Phosphatase
  273. Isoenzyme der alkalischen Phosphatase
  274. 2.17.8 Liquorprotein-Elektrophorese
  275. Serumprotein-ähnliches Pherogramm
  276. Permeabiltäts-Pherogramm
  277. Gamma-Globulin-Pherogramm
  278. Laboruntersuchungen bei der multiplen Sklerose
  279. Degeneratives Pherogramm
  280. 2.17.9 Urinprotein-Elektrophorese
  281. Proteinurien
  282. Problemlösungen
  283. Aufgaben 2
  284. 3 Elektrophorese der Nukleinsäuren
  285. 3.1 Submarine-Zonenelektrophorese der Nukleinsäuren
  286. 3.1.1 Puffer für Submarine-Zonenelektrophorese
  287. 3.1.2 Herstellung von Agarosegelen für Submarine-Elektrophorese
  288. 3.1.3 Probenvorbereitung
  289. 3.1.4 Elektrophoretische Trennbedingungen
  290. 3.1.5 Ermittlung der Molekülmassen von DNA-Bruchstücken größer als 1 Kilobase
  291. 3.1.6 Pulsfeld-Zonenelektrophorese
  292. 3.1.7 Elution der DNA aus Agarosegelen
  293. Problemlösungen
  294. 3.2 Polyacrylamidgel-Zonenelektrophorese der Nukleinsäuren
  295. 3.2.1 Vertikal-Zonenelektrophorese
  296. 3.2.2 Horizontal-Zonenelektrophorese
  297. 3.2.3 Elution der DNA aus Polyacrylamidgelen
  298. Problemlösungen
  299. 3.3 Disk-Elektrophorese der Nukleinsäuren
  300. 3.3.1 Disk-Elektrophorese von PCR-Produkten
  301. Problemlösungen
  302. 3.4 SDS-Elektrophorese der Nukleinsäuren
  303. Problemlösungen
  304. 3.5 Temperaturgradientengel-Elektrophorese der Nukleinsäuren
  305. Problemlösungen
  306. 3.6 Auswertung der Nukleinsäure-Pherogramme
  307. 3.6.1 Fluoreszenz-Nachweismethode
  308. 3.6.2 Silberfärbung der Nukleinsäuren
  309. 3.6.3 Autoradiographie der Nukleinsäuren
  310. Problemlösungen
  311. 3.7 Blotting der Nukleinsäuren - Southern- und Northern-Blotting
  312. 3.7.1 Transfer
  313. Diffusionsblotting
  314. Kapillarblotting
  315. Vakuumblotting
  316. Elektroblotting der Nukleinsäuren
  317. 3.7.2 Blockierung
  318. 3.7.3 Detektion mit Sonden und Farbstoffen
  319. Problemlösungen
  320. 3.8 Fertiggele für die Nukleinsäure-Elektrophorese
  321. 3.8.1 Agarose-Fertiggele
  322. 3.8.2 Polyacrylamid-Fertiggele
  323. Problemlösungen
  324. Aufgaben 3
  325. 4 Gegenwart und Zukunft der Elektrophorese
  326. 4.1 Worauf ist bei der Elektrophorese zu achten?
  327. Gefahr durch Objekte, die zur Untersuchung anstehen
  328. Gefahr durch das Trennmedium
  329. Gefahr durch vor- oder nachelektrophoretische Behandlungen
  330. Gefahr durch elektrophoretische Bedingungen
  331. 4.2 Tendenzen in der Entwicklung der Elektrophorese
  332. Freie oder Träger-Elektrophorese?
  333. Vertikal- oder Horizontalelektrophorese?
  334. Welche Gele werden bevorzugt?
  335. Selbstproduzierte Gele und Kits, oder Fertiggele und -kits?
  336. Wird die Elektrophorese beschleunigt und automatisiert?
  337. Welche elektrophoretische Methoden haben eine Zukunft?
  338. Werden neue Auswertungsmethoden entwickelt?
  339. Wird die Bedeutung des Blottings steigen?
  340. Wird die Elektrophorese mit nichtelektrophoretischen Methoden verknüpft?
  341. Anhang
  342. Chronologie der Elektrophorese
  343. SI-Einheiten und physikalische Konstanten für die Elektrophorese
  344. Lösung der Aufgaben
  345. Stichwortverzeichnis